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免疫组化染色中“杂音”染色片的种类及解决办法
作者：德尔塔 日期：2022-04-30
免疫组化除正常的真实的阳性信号外常常会遇到不正常的背景着色，这些非正常的着色称为“杂音”染色。“杂音”染色种类繁多，产生的原因也多种多样，为了便于说明，笔者将其归纳为下面几种。 1、全片着色 全片着色是指整个切片全都染上了颜色，着色的强度可深可浅，总之，分不清那些组织是阳性那些组织是阴性。出现这种现象的原因有： （1）抗体浓度过高：一抗浓度过高是常见的原因之一。解决办法是，每次使用新抗体前应当对其工作浓度进行测试，使每一抗体个体化，找到适合自己实验室的理想工作浓度，既使是即用型的抗体也应如此，不能只简单的按说明书进行染色。 （2）抗体孵育时间过长或温度较高：解决办法是，严格执行操作规程，**随身佩带报时表或报时钟，及时提醒，避免因遗忘而造成时间延长。现在流行的二步法（Polymer）敏感性很高，要求一抗孵育的时间不是传统的1小时，而是30分钟，因此，要根据染色结果进行调整。 （3）DAB变质和显色时间太长：DAB**现用现配，如有沉渣应进行过滤后再用。配制好的DAB不应存放时间太长，因为在没有酶的情况下，过氧化氢也会游离出氧原子与DAB产生反应而降低DAB的效力，未用完的DAB存放在冰箱里几天后再用这种似乎节约的办法是不可取的。DAB的显色**在显微镜下监控，达到理想的染色程度时立即终止反应。不过当染色片太多时或用染色机时，这样做似乎不现实，但至少应对一些新的或少用的抗体显色时进行监控，避免显色时间过长。 （4）组织变干：修复液溢出后未及时补充液体、染色切片太多、动作太慢、忘记滴液、滴液流失等都是造成组织变干的原因。解决的办法是操作要认真仔细，采用DAKO笔或PAPPen在组织周围画圈，可以有效的避免液体流失，也能提高操作速度。 （5）切片在缓冲液或修复液中浸泡时间太长（大于24小时）：原因上不清楚，但现象存在。有的实验室喜欢前一天将切片脱蜡至修复，第二天加抗体进行免疫组化染色，如果将装有切片和修复液的容器放在4度冰箱过夜，对结果无
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解析免疫组化染色出现无色片的原因及解决方法
作者：德尔塔 日期：2022-04-30
良好的免疫组化染色切片是正确判断染色结果的基础和前提。由于免疫组化染色过程中存在很多步骤或环节，每一个步骤或环节都可能影响到染色的最终结果，因此，要做好一张高质量的免疫组化切片并不是一件非常容易的事。需要病理技术员和病理医生密切配合、相互协调、共同努力才能保证做出合格的免疫组化切片。虽然免疫组化染色可以存在各种各样的问题，但从染色的结果看，一般可分为两类：无色片（即无阳性信号）和“ 杂音”染色片（有阳性信号）。以下解析“无色片”。 染色结束后，切片中见不到任何阳性信号。这是常规工作中比较常见的现象，出现这种现象，有两种可能： 1、真阴性结果：整个染色过程没有出现问题，组织或细胞确实不表达与抗体相关的抗原。 2、假阴性结果：即此阴性结果不是真实的反映。 假阴性结果又可分为两种情况： （1）切片中根本就不包含所预期检查的组织或细胞。出现这种情况，要麽是病理医生选择错了切片或抗体选错了，要麽是技术员选错了蜡块。获得正确的切片进行染色是获得正确结果的前提。由此表明：制作出合格的免疫组化切片不仅仅是技术员的事，病理医生也起着不可缺少的作用。 （2）染色过程中的某一或某些环节出了问题。比如，组织未进行抗原修复，有的组织必须经过抗原修复才能检测抗原表达；或选用了只能用于冰冻组织而不能用于石蜡包埋组织的抗体；或一抗失效，虽然抗体失效在理论上是一个逐渐的过，但偶尔也遇到突然失效的情况，抗体长期不用和/或已超过有效期是主要的原因。也可见于染色过程中漏掉了某一环节，如忘记加二抗或三抗，或用了两次二抗而缺少了三抗，或配制DAB时少了过氧化氢。为了避免这种简单的错误，有一种简单的方法：在三抗孵育结束时，将切片上的三抗甩在一张白纸上，在将配制好的DAB 滴一滴在白纸的三抗上，观察是否出现棕色。如果出现了，证明三抗和DAB的配制过程没有错误。如果这种DAB再滴到切片上没有出现任何阳性信号，问题一定是出在三抗以前。如果纸上不出现
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病毒保存：超低温法
作者：德尔塔 日期：2022-04-30
大多数微生物可用超低温保存，超低温保存法是适用范围最广的微生物保存法。需要复杂营养的微生物种，如用其他的贮存方法不能保持其活力（ 如植物的病原性真菌），通常可用超低温的方法保存（ATCC 1983；Halliday，Baker 1985）。此法是将冻存在小管或安瓿里的细胞以较慢的冷冻速率（1℃／分钟）冷冻，直至—150℃，再将这些小管贮存在—150～－196℃的液氮中。 超低温的冷冻保护剂不同于冻干法所用的冷冻剂。ATCC 常用一种由甘油（10％）、二甲亚砜（5％）和培养液制成的混合剂保存多数的细胞株。这些化学试剂进入细胞内可避免内膜的冷冻损伤。贮存在低温容器内的细胞复苏时必须小心操作。当小管被加热时，所形成的冰晶会将细胞杀死，正确操作就可避免这种事故。只要迅速将样品解冻就能减少活力的丢失，做法是：将封口的小管迅速放入37℃的水中，直至所有的冰融化，然后打开管口，将内容物移入培养基。 超低温保藏的微生物必须始终贮存在温度非常低的环境中，因此需要液氮罐。在长期贮存的过程中必须经常注意补充液氮。这种贮存方式比冻干法需要更多的经费，包括为了维持贮存温度所必要的劳动力和液氮等。 材料 病毒超低温保存所需材料有：热收缩塑料管，液氮罐，防护手套和面罩，永久性记号笔，气体喷灯，装液氮的保温瓶。 方法 （1）剪一段两端各超出冷冻管长度2cm 的热收缩塑料管。 （2）将含有澄清病毒悬液（组织培养的上清培养基，或组织培养基内的细胞溶解产物均可）冰浴几分钟，用灭菌移液管将0.2ml 冰浴过的上清悬液分装到冷冻管内，并将盖子拧紧。 （3）将有病毒的冷冻管放入热收缩塑料管中部，插入正确的标签。 （4）用喷灯小心加热热收缩塑料管，并使之包住冷冻管。注意不要用太高的温度加热热收缩塑料管。 （5）再小心加热热收缩塑料管的两端，用大号镊子夹紧管的端口至完全密封。 （6）将密封好的冷冻管快速在装有液氮的保温瓶中冷冻（操作时要求戴面罩和手套）。 （7）将冷冻过的冷冻管放入液氮罐中的格子内
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实验动物免疫方案一览
作者：德尔塔 日期：2022-04-30
1、抗原: 蛋白质、多肽、细胞器、细胞、组织等。 2、免疫方式：皮下注射、腹腔注射、静脉注射、肌肉注射等。 3、不同动物免疫所需抗原量（以蛋白免疫为例） >18-20kDa
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浅谈荧光在酶标仪上的应用以及新一代酶标检测系统（Paradigm+Tune）的优势
作者：德尔塔 日期：2022-04-30
前言 我们知道目前生命科学及现代分子生物学主要集中在对核酸和蛋白质等生物大分子的分析以及进行一些细胞水平的研究。传统的分析方法是采用放射性同位素作为一种示踪剂，标记在各种生物大分子或者细胞中来研究它们之间的相互作用和变化，但是放射性同位素对环境具有一定的破坏性，对人体健康也具有一定的损害，所以各国的科学家都致力于研究和应用高灵敏度的非同位素检测方法，利用荧光探针作为一种标记物，以其自身的一些优势而得到广泛的应用。目前对荧光进行检测的仪器种类很多，例如我们常见的荧光显微镜、激光共聚焦显微镜、流式细胞仪、多功能读板仪（酶标仪）等，普通的荧光显微镜只能观察物质形态，不能给出量化指标，而流式细胞仪又因其价格昂贵和操作复杂不能得到广泛的应用。酶标仪作为一种荧光信号检测仪器，具有很多优势，不但价钱便宜、个头小、操作简便，而且还可以根据荧光信号特点和强弱来对物质进行定性和定量的分析。目前市面上支持荧光检测的多功能酶标仪种类很多，例如的系列的，，和，和目前市面上唯一一款可以完成快速动力学实验的等。 荧光产生机理 荧光探针（荧光染料分子）在光的照射下，物质的电子吸收能量后，可由低能级的电子层（内电子层）跳到高能级的电子层。此时，电子由低能态进入高能态。高能态的电子是不稳定的，他会在极短的时间（10-8s）内，以辐射光量子的形式释放能量后，再回到原来的能态。这时发射出的波长比激发光的波长要长，如果在可见光波长的范围内，为人眼所能看见的光，这种光称之为荧光。荧光是发光体分子中处于激发态的原子核外电子由高能级回到低能级所产生的辐射，因此是冷光。荧光的颜色多为蓝色、绿色、红色和黄色等。 荧光检测技术优势和影响因素 荧光检测技术具有灵敏度高、特异性好、动态范围宽、无放射性污染等优点；但也易受到反应体系中PH值和环境温度的影响，另外如荧光淬灭、光漂白等现象也会对荧光信号的检测产生较大的影响。 我们
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抗体保存注意事项和保存条件
作者：德尔塔 日期：2022-04-30
抗体保存得当与否，直接决定了抗体的活性和使用效果！如果抗体保存得当，大部分抗体活性都可以维持数月甚至数年。以abcam 抗体保存方法为主，同样也可以应用到其他绝大部分的抗体产品！ 1. 收到抗体后请务必在12000rpm 离心1-5min 后再打开管盖进行分装和保存！质优的抗体使用非常特殊的储存管，只有在12000rpm 离心1-5min 才能将附着在管壁或盖内的抗体全部离心下来。即使是在10000rpm 离心也会导致离心不完全，导致出现抗体的量不足的现象！ 2. 对于大部分抗体，比较合适的保存方式是分装后保存在 -20 度 or -80 度对绝大多数抗体来说，保存在-20 度是完全足够了。没有任何证据显示保存在-80度 会有更多的好处！ (1) 分装可以最大程度的降低反复冻融对抗体活性的损害，同时也降低了由于多次从同一管中吸取抗体造成的污染可能性。 (2) 分装的量以一次实验用完为好，最少不能少于10ul 每份。因为分装体积越小，抗体的浓度越可能会受到蒸发以及管壁吸附的影响 (3) 复融后的分装抗体如果一次用不完，将剩余母液保存在4 度，避免再冻起来！ (4) 抗体工作液应该当天配制当天用完，在4 度 尽量不要超过1 天。 (5) 绝对避免将抗体保存在自动除霜冰箱中。尽量将抗体保存在冰箱里层，而不是门上 3. 大部分抗体收到后4 度短暂保存1-2 周对抗体活性是没有影响的。 如果抗体很快(1-2 周)会使用，推荐在4 度保存，这是为了避免反复冻融对抗体活性的损害。 如果要长期保存则**是在-20 度 or -80 度。最关键的一点是要根据说明书推荐的方式来正确的保存抗体！但是，腹水形式的产品请在收到后立即冻起来！因为该类产品含有大量的蛋白酶，长期在4 度保存会导致抗体的降解！ 4. 大部分抗体的运输条件：一般的运输过程需要1-2 周的时间，所以是在4 度的条件下来完成的。4 度运输最主要的目的是为了避免反复冻融对抗体活性的损害(如果使用干冰运输，那么收到时抗体是冻起来的，为了分装就需要解冻。这就多了一次冻融的过程)。所以
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进口内参抗体——在WB实验中为什么需要使用内参抗体？
作者：德尔塔 日期：2022-04-30
要检测一个基因的表达产物是否正确，或者比较表达产物量的相对变化，**方法是Western Blot。虽然，顺利的时候Western Blot做起来很简单，可不顺的时候也很令人心烦――做不出结果啦、假阳性啦、结果出现多条带啦、到底是一抗有问题还是二抗有问题啦……毕竟，作为一种有活性的生物大分子，抗体和抗原的反应毕竟不象1+1那么明确，而用这种不确定的试剂来测定同样知之甚少的表达产物，确实是有一定的不确定性的。所以，严谨的Western Blot实验设计中要求有良好的参照体系，对实验结果分析是非常有用的。 我们知道，要用Western Blot比较不同条件下或者不同组织中，目的蛋白表达量的相对多少，前提条件是等量的细胞上样，才有比较的基础。特别表达量不高时，上样量的差别就很可能影响结果的分析。艾美捷向您推荐使用内参抗体来检测您的实验系统，或者校准您的实验结果。内参即是内部参照(Internal Control)，对于哺乳动物细胞表达来说一般是指由管家基因编码表达的蛋白(Housekeeping Proteins)，它们在各组织和细胞中的表达相对恒定，在检测蛋白的表达水平变化时常用它来做参照物。在Western Blotting中使用内参其实就是在WB过程中的另外用内参对应的抗体检测内参，这样在检测目的产物的同时可以检测内参的表达，由于内参在各组织和细胞中的表达相对恒定，借助检测每个样品内参的量就可以用于校正上样误差，这样半定量的结果才更为可信。此外使用内参可以作为空白对照，检测蛋白转膜情况是否完全、整个Western Blot显色或者发光体系是否正常。 实验结果分析其实很简单：如果样品蛋白量有限，只够进行一次电泳转膜实验时，分别检测样品的内参量和目的蛋白量。将各样品目的蛋白量分别除以其内参含量，得到的数值即为内参校正后的各样品中目的蛋白相对含量，再用此数值进行样品间的比较和分析，得到目的蛋白含量在不同样品间的实际变化结果。如果样品量充分，可以先检测内参，观测样品间内参显色条带是否一致，根据差
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PriCells: Isolation of endothelial progenitor cells (EPCs)
作者：德尔塔 日期：2022-04-30
PriCells: Isolation of endothelial progenitor cells (EPCs) 1. Twenty-four mL venous blood was collected at each time point into Vacutainer CPT Mononuclear Cell Preparation Tubes. 2. MNCs recovered by density-gradient centrifugation in these tubes were washed twice with PBS and once in EPC growth media consisting of medium199 supplemented with 20% fetal bovine serum, penicillin (100 U/mL), and streptomycin (100 μg/mL). 3. Cells were resuspended in media, plated at a density of 5x106 per well on dishes coated with human fibronectin, and incubated at 37°C in humidified 5% CO2. 4. After 48 hours, nonadherent cells suspended in the growth media were replated onto fibronectin-coated 24-well plates at a density of 106 per well. 5. Media was changed every 3 days. EPC colony-forming units after 7 days in culture (Figure A). Cell clusters alone without emerging spindle cells (Figure B). Reference Tiffany M. Powell, Jonathan D. Paul, Jonathan M. Hill, Michael Thompson, Moshe Benjamin, Maria Rodrigo, J. Philip McCoy, Elizabeth J. Read, Hanh M. Khuu, Susan F. Leitman, Toren Finkel, Richard O. Cannon III. Granulocyte Colony-Stimulating Factor Mobilizes Functional Endothelial Progenitor Cells in Patients With Coronary Artery Disease. Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 2005; 25: 296-301
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PriCells: Questions
作者：德尔塔 日期：2022-04-30
PriCells: Questions Questions 1: Isolation of hepatocytes from other species The basic two-step perfusion procedure can be used for obtaining hepatocytes from various rodents, including mouse, rabbits, guinea pig, or woodchuck, by adapting the volume and the flow rate of the perfused solutions to the size of the liver. The technique has been adapted for the human liver by perfusing a portion of the whole liver (usually with 1.5 L HEPES buffer and 1 L collagenase solution at 70 and 30 mL/min, respectively) or by taking biopsies (15-30 mL/min, depending on the size of the tissue sample). A complete isolation into a single-cell suspension can be obtained by an additional collagenase incubation at 37oC under gentle stirring for 10-20 min (especially human liver). Fish hepatocytes can be obtained by cannulating the intestinal vein and incising the heart to avoid excess pressure. Perfusion is performed at room temperature at a flow rate of 12 mL/min Question2: Maintenance and differentiation of liver parenchymal cells 1. Isolation liver parenchymal cells can be maintained in suspension for 4-6 h and used for short-term experiments 2. When seeded in nutrient medium supplemented with 1X106 M dexamethasone on plastic culture dishes (7X105 viable cells/mL), the liver parenchymal cells survive for a few days. 3. Survival for several weeks is obtained by seeding the liver parenchymal cells onto a biomatrix. However, the cells rapidly lose their specific differentiated functions. 4. Higher stability (2 months) can be obtained by co-culturing hepatocytes with liver e
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法测效靶细胞杀伤——用流式细胞术
作者：德尔塔 日期：2022-04-30
做免疫学特别是肿瘤学实验，总免不了要测淋巴细胞或其他细胞对肿瘤细胞的杀伤，国外最常用的是Cr51放射实验，但这个方法在国内的不少地方都不能做，而MTT这个方法又太老，而且也不准确，那么替代方法就用流式细胞术，又方便，又准确。 具体参照如下： 1、计数靶细胞，并加入CFSE，使CFSE终浓度达到2uM,37度30分钟。 2、拿出后，1000rpm,5min,可隐约看到细胞染成黄色，PBS洗三次 3、与效应细胞混培，作用4-6小时。 4、将细胞混合液消化取出，洗二次，PI工作液5ul，避光30分钟后上流式 5、CFSE，PI双阳性的细胞为被杀伤的靶细胞，除以靶细胞总数，即为杀伤率。 注意事项： 1、CFSE及PI的浓度必须注意，宁低勿高，个人感觉，如果标高的话，在4度放一晚好像会好一些 2、必须设全阴，CFSE单标，PI单标，CFSE＋PI双标并同步化的靶细胞的参照. 3、作用时间不能太长，不要超过8个小时。 你可能感兴趣的生物试剂： 肿瘤/凋亡研究相关抗体 人、大小鼠等Elisa检测试剂盒 生长因子 趋化因子 蛋白酶 神经营养素
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Fluorescent Staining of Cells
作者：德尔塔 日期：2022-04-30
1. Fluorescent phalloidin in methanol. Phallacidin does not work as well. Dilute 10 ul 330 nM stock into 500 ul PBS for each large coverslip. 2. PBS, solution A. Procedure: 1. Fix and permeabilize cells (see other protocols). Mount coverslip onto a plastic frame reserved for fixed samples. Apply some vacuum grease to the frame before use, if necessary. 2. Turn off light. Dilute fluorescent phalloidin 50x into PBS. 3. Gently pipet phalloidin solution onto coverslip. Stain for 30 min at room temperature. 4. Rinse coverslip 3x with PBS. 5. Fill the chamber with PBS or an antibleaching solution and observe. Dishes may be stored at 4o in a sealed, light-tight container. Immunofluorescence Staining Materials: 1. PBS/BSA: PBS solution A with 1% BSA (Boehringer Mannheim 100 350) and 0.1% NaN3, stored at 4oC. Bring to room temperature before use. 2. Primary antibody, diluted appropriately with PBS/BSA. Need 200 ul per 45x50 coverslip. Clarify in a Eppendorf for 15 min (minimal requirement) or in an ultracentrifuge with the Type 42.2Ti rotor (or Airfuge) if necessary. 3. Secondary antibody, prepared as for the primary antibody. 4. Coverslip boxes. Procedure (do not allow coverslips to dry out anytime): 1. Fix and permeabilize cells (see other protocols). Wash with PBS/BSA for 10 min in a fixation box. 2. Cut a small piece of parafilm to match the area of staining and put 200 ul antibody solution on the piece. Shake off most of the liquid from the coverslip but do not let it dry out. Invert the coverslip onto the parafilm. Prepare a 100 mm plastic petri dish containing a
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Fusion and Cloning
作者：德尔塔 日期：2022-04-30
本文章来源于SciMall科学在线 Reagents Medium A - Pre-fusion Medium and Hybridoma Expansion Medium Medium B - Fusion Medium Medium C - Hybridoma Recovery Medium Medium D - Hybridoma Selection Medium Medium E - Hybridoma Growth Medium PEG Solution Materials 50 ml Sterile conical tubes 15 ml Sterile conical tubes 10 ml sterile pipets 1 ml sterile pipets Pasteur Pipets, sterile 100 mm sterile Petri Dishes 96-well culture dishes 24-well culture dishes Forceps Scissors Multi-channel pipettor, 50-200μl Pipet tips, sterile Reagent Reservoir, sterile Tupperware container Myeloma Cells 1. One week prior to the fusion, split myeloma cells into Medium A to ensure that they are well adapted. 2. Grow up approximately 2 x 107 healthy cells, in mid-log phase, for each fusion Fusion 1. Count the myeloma cells and resuspend to 2 x 107 cells in 30 ml Medium A in a 50 ml tube. 2. Sacrificed the mouse, saturate in ethanol, and remove the spleen. 3. Place the spleen in a Petri dish containing 10 ml of Medium A. 4. Prepare a single cell suspension of the spleen. 5. Using a Pasteur Pipet, transfer the spleen cells to a 50 ml tube. 6. Rinse the Petri dish with another 10 ml of Medium A and add to the tube. 7. Allow the tube to sit for approximately 1 minute to settle the larger pieces of tissue. Transfer the cell suspension to a clean tube, leaving behind the larger pieces of tissue. 8. Add 10 ml of Medium A to the tube to wash the tissue pieces. Allow to settle. Transfer the medium to the clean tube, co
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3H-Thymidine Uptake by Cultured Cells
作者：德尔塔 日期：2022-04-30
Materials Fibroblast cells in log phase growth Ca , Mg free-phosphate buffered saline (PBSA) 5% (w/v) Glutaraldehyde (GTA) 2% (w/v) Perchloric Acid (PCA)Subbed slides (coated with chrom alum gelatin) and Permount Nuclear Track Emulsion (Kodak or Ilford) Darkroom and chemicals for photographic processing Dektol developer Kodak Fixer Giemsa stain, graded series of alcohols, xylol Procedure Grow either L cells (Mouse fibroblasts) or chick embryo fibroblasts on coverglasses and then give them H-thymidine for a short period of time. At the end of the labeling period, wash the coverslips in PBSA by gently grasping a coverslip with forceps and passing it through a beaker of saline. Fix cultures in glutaraldehyde for 15 minutes. Wash in several changes of water. Wash in cold 2% PCA for 5 minutes to remove unincorporated labeled precursors to DNA. Repeat twice. Wash in water 5 minutes. Repeat. Dry the backs of the coverslips with filter paper, and mount CELL SIDE UP on slides with Permount.The slides should be very clean. Coat the slides beforehand with chrom alum gelatin (CAG) by dipping the slides into CAG solution and draining until dry. This coating, and the gelatin coating on the coverslips, help to prevent the emulsion layer (below) from pulling away from the slide during later development. Allow Permount to dry overnight. In a darkroom, spoon out a small amount of gel into a suitable vessel, and slowly melt it at 45° C in a water bath.Kodak NTB-3 emulsion is stored refrigerated as a gel in a screw cap bottle inside a double light-tight box. Dip the slide in the
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肌动蛋白（Actin）动力学调节机制
作者：德尔塔 日期：2022-04-30
细胞骨架的定义分为狭义和广义两种，前者是微丝，微管和中间纤维的总称，它们存在于细胞质内，又被称为“胞质骨架”。后者还包括细胞外基质（extracellular matrix）、核骨架（nucleoskeleton）和核纤层（nuclear lamina）。细胞骨架是细胞内运动，细胞器固定，细胞外型维持，信号传导和细胞分裂的物质基础之一。 信号分子结合到膜上受体，或者是激活与受体偶联的蛋白质—大G蛋白，或者先是激活受体酪氨酸激酶，再激活下游的小G蛋白Ras。G蛋白是一个很大的家族，包括Rho，Rac，Ras等小家族，它们在细胞中扮演着信号传导开关的角色。当它们与GDP结合时，呈现失活状态。在鸟嘌呤交换因子（英文：Guaninexchangefactor，简称GEF）的帮助下，G蛋白脱离GDP并与GTP结合，进入激活状态。G蛋白的GTP会被GTP酶激活蛋白（英文GTPase-activatingproteins，简称GAP）水解，并释放出其中的能量，让G蛋白行使其功能。就是说，G蛋白通过这一GTP/GDP循环在激活/失活状态中回旋，传递信号。当G蛋白被激活后，它下游的多种分子会被激活。这些下游分子本身会形成网络，相互制约，或者是相辅相成。它们调控着细胞迁移中各个方面。它们作用的详细情况请见文章中的相应章节。 本信号转导涉及的信号分子主要包括： Sema1a，PlexinA，Mical，Integrin Recaptor，Src，Paxillin，FAK，PI3K，PI3Kα，GRB2，GEF，Ras，P130，GIT1，GIT2，PIP2，PIP3，Cofilin，Crk，PIX，TIAM1，Vav，MEKK，Cartactin，WAVE，PI5K，ROCK，RTK，PLCβ，PLCγ，Nck，WASP，CaM，GPCR，PKA，PKCα，Fascin，Ena，VASP，PIX，cdc42，Filamin，MEK，MLCK，RhoGEF，Rho，ROCK，mDIA，MBS，Profilin，MLC，Arp2，Arp3，IP3，CaM，LIMK，PKD1，Calcineurin，SSH，14-3-3ζ，CIN，Cofilin，Hsp90，Gelsolin，ADF，CapZ，Tmod，Tropomyosins等。 点击图中信号分子，自动寻找相关产品
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血管生成（Angiogenesis）信号通路图
作者：德尔塔 日期：2022-04-30
血管生成是通过人体中存在的诸多互补和复杂的信号途径调节的.血管内皮生长因子(VEGF)-血管内皮生长因子受体(VEGFR)、血管生成素(Ang)-Tie2轴和Dll4-Notch这3个复杂的、相辅相成的信号传导通路可在调节血管生成中发挥重要作用. VEGF与内皮细胞上的两种受体KDR和Flt-1高亲和力结合后，直接刺激血管内皮细胞增殖，并诱导其迁移和形成官腔样结构；同时还可增加微血管通透性，引起血浆蛋白（主要是纤维蛋白原）外渗，并通过诱导间质产生而促进体内新生血管生成。VEGF在血管发生和形成过程中起着中枢性的调控作用，是关键的血管形成刺激因子。碱性成纤维细胞生长因子（bFGF）。TNF-α是一类具有血管活性的细胞因子，可诱导异位子宫内膜炎性细胞因子MCP-1，IL-6和IL-8等的释放，促进异位内膜及基质细胞增殖及炎性细胞浸润，新生血管形成，组织粘连，从而形成异位病灶。 本信号转导涉及的信号分子主要包括： HIF1α，PHDs，HIF1β，PI3K，Akt，mTOR，S6K，4E-BP1，eIF4E1，elF4E1，Ras，MEK1，MEK2，Erk1，Erk2，MNK，CBP，P300，TCEB1，TCEB2，Rbx1，Cul2，VHL，MMP，Cox2，PAI-1，VEGF，PDGFR-β，VEGFR2，Tie2，FGFR，IGFR，TGFα-R，SLIT，ROBO，Src，FAK，p38，MAPK，Smad2，Smad3，PLCγ，NOS等。 点击图中信号分子，自动寻找相关试剂
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